بخش ۰۲ · سلول‌های بنیادی رویانی و پرتوان

سلول‌های بنیادی رویانی و پرتوان

منشأ و کشت ESC، EGC و ECC، لایهٔ تغذیه‌کننده، مارکرهای پرتوانی، تشکیل جسم رویانی، آزمون‌های اثبات پرتوانی، ایمنی، رد پیوند، اخلاق و روش‌های جداسازی تودهٔ سلولی داخلی

۲۱بخش آموزشی
۶نقشه ذهنی
۲۵جدول مقایسه‌ای
۱۳شکل آموزشی
دسترسی سریع به مباحث
۰۱
رده‌بندی منشأ

انواع سلول‌های بنیادی و سلول‌های پرتوان رویانی

نقشهٔ ذهنی منشأ سلول‌های پرتوان رویانی
سلول‌های پرتوان رویانی سه منبع اصلی با منشأ و کاربرد متفاوت

ESC

از تودهٔ سلولی داخلی بالستوسیست جدا می‌شود و نمایندهٔ کلاسیک سلول بنیادی رویانی است.

EGC

از سلول‌های زایای بدوی در ستیغ تناسلی جنین جدا می‌شود.

ECC

از تومورهای سلول زایا در گناد یا نواحی خارج‌گنادی به دست می‌آید.

وجه مشترک

هر سه گروه توان تمایز گسترده دارند، اما منشأ، ایمنی و کاربرد پژوهشی آن‌ها یکسان نیست.

گروهنام کاملمنشأ جداسازیویژگی مهم
ESCسلول بنیادی رویانیتودهٔ سلولی داخلی بالستوسیستسلول پرتوان کلاسیک برای کشت و تمایز
EGCسلول زایای رویانیسلول زایای بدوی در ستیغ تناسلیمنشأ جنینی و توان تمایز گسترده
ECCسلول کارسینومای رویانیتومورهای سلول زایا در گناد یا خارج گنادپرتوان ولی توموری

نکتهٔ امتحانی

هر سه گروه می‌توانند پرتوان باشند، اما منشأ ESC، EGC و ECC یکسان نیست. سؤال‌های مقایسه‌ای معمولاً از محل جداسازی طرح می‌شوند.

۰۲
مراحل آغازین رویان

از زیگوت تا بالستوسیست

مرحلهویژگیاهمیت برای سلول بنیادی
زیگوتسلول حاصل از لقاحآغاز تقسیم‌های رویانی
مرحله‌های ۲، ۴، ۸ و ۱۶ سلولیتقسیم‌های پی‌درپی بلاستومرهاافزایش تعداد سلول بدون تشکیل بافت تخصصی
مورولاتودهٔ فشردهٔ سلولیپیش‌مرحلهٔ تشکیل حفرهٔ بالستوسیست
بالستوسیستساختار حفره‌دار با دو جمعیت سلولیمنبع جداسازی ICM و ایجاد ردهٔ ESC
جمعیت بالستوسیستنام دیگرسرنوشتمارکرهای منبع
تودهٔ سلولی داخلیامبریوبلاستساخت جنین و منبع ESCOCT4، Nanog، STAT3
تودهٔ سلولی خارجیتروفوبلاستمشارکت در تشکیل جفتEomesodermin، CDX2

دام مفهومی ۱

ESC از تودهٔ سلولی داخلی جدا می‌شود، نه از تروفوبلاست. بیان CDX2 یا Eomesodermin به نفع هویت تروفوبلاستی است.

۰۳
نقاط عطف تاریخی

جداسازی ESC موشی و انسانی

۱۹۸۱مارتین ایوانس ESC موشی را از بالستوسیست جدا کرد و نقش لایهٔ تغذیه‌کننده را در جلوگیری از تمایز نشان داد.
۱۹۹۸تامسون ESC انسانی را از جنین ۵ تا ۷ روزهٔ حاصل از لقاح آزمایشگاهی جدا کرد.
۱۹۹۸در متن، جداسازی سلول‌های زایای رویانی از ستیغ تناسلی نیز به این دوره نسبت داده شده است.
آزمایشنتیجهبرداشت
کشت ICM روی فیبروبلاست جنینی موشتکثیر مداوم و تمایز کمتروجود حمایت‌کنندهٔ ریزمحیطی
کشت ICM روی ظرف معمولیتمایز تدریجینبود سیگنال نگهدارندهٔ پرتوانی
۰۴
مورفولوژی کلونی

کلونی‌های ESC انسانی و موشی

کلونی سلول بنیادی رویانی انسانی
کلونی سلول بنیادی رویانی انسانی
کلونی سلول بنیادی رویانی موشی روی لایه تغذیه‌کننده
کلونی سلول بنیادی رویانی موشی روی لایهٔ تغذیه‌کننده
ویژگی قابل بررسیکاربرد در ارزیابی کشت
مرز کلونیتشخیص رشد منظم یا شروع پراکندگی و تمایز
تراکم سلول‌هاارزیابی حفظ ویژگی کلونی و سلامت رشد
ارتباط با لایهٔ فیدربررسی حمایت فیزیکی و تغذیه‌ای
وجود سلول‌های تخت و پراکندهمی‌تواند نشانهٔ ورود به تمایز باشد

دام عملی ۲

صرف تشکیل تودهٔ سلولی، هویت ESC را ثابت نمی‌کند؛ مارکرها، مورفولوژی و آزمون عملکردی باید هم‌زمان بررسی شوند.

۰۵
شرایط نگهداری

لایهٔ تغذیه‌کننده و حفظ حالت تمایزنیافته

کشت سلول بنیادی رویانی انسانی روی لایهٔ تغذیه‌کننده موشی
کشت سلول بنیادی رویانی انسانی روی لایهٔ تغذیه‌کنندهٔ موشی
نقشهٔ ذهنی حفظ حالت تمایزنیافتهٔ ESC
حفظ پرتوانی در کشت تعادل میان خودنوزایی و جلوگیری از تمایز خودبه‌خودی

لایهٔ تغذیه‌کننده

MEF یا سلول‌های حمایتی با ترشح عوامل لازم، بقای کلونی و حالت بنیادی را حفظ می‌کنند.

فاکتورهای مولکولی

OCT4، Nanog و STAT3 در چارچوب جزوه از عوامل مهم حفظ حالت پرتوان معرفی شده‌اند.

LIF

قرارگرفتن سلول‌ها در مجاورت LIF از خانوادهٔ اینترلوکین ۶، تمایز را مهار می‌کند.

حذف حمایت

برداشتن لایهٔ تغذیه‌کننده یا عوامل نگهدارنده، تشکیل جسم رویانی و ورود به مسیر تمایز را تسهیل می‌کند.

عاملنقشحذف یا اختلال
MEFحمایت از بقا و حفظ کلونی تمایزنیافتهافزایش تمایل به تشکیل جسم رویانی و تمایز
CHOدر متن به‌عنوان لایهٔ تغذیه‌کنندهٔ جایگزین مطرح شده استکاهش عوامل حمایتی
LIFمهار تمایز در چارچوب جزوهورود آسان‌تر به مسیر تمایز
OCT4، Nanog و STAT3حفظ شبکهٔ مولکولی حالت پرتوانحرکت به سوی تروفوبلاست یا رده‌های تمایزی

نکتهٔ امتحانی

هدف لایهٔ تغذیه‌کننده فقط «غذا دادن» نیست؛ این لایه با ترشح عوامل و ایجاد ریزمحیط، حالت بنیادی و پرتوانی را حفظ می‌کند.

۰۶
تهیهٔ سلول پشتیبان

مراحل جداسازی فیبروبلاست جنینی موش

مراحل جداسازی فیبروبلاست جنینی موش
مراحل جداسازی فیبروبلاست جنینی موش برای تهیهٔ لایهٔ تغذیه‌کننده
جفت‌گیری موش نر و ماده و تعیین روز نخست بارداری با مشاهدهٔ پلاک واژنی.
صبر تا حدود روز سیزدهم بارداری و خارج‌کردن جنین‌ها از رحم.
حذف اندام‌ها و بخش‌های قرمز و نگهداری بافت‌های مناسب فیبروبلاستی.
استفاده از آنزیم برای جداکردن سلول‌ها و انتقال به محیط کشت.
رشد دو تا سه‌روزه در انکوباتور و گسترش سلول‌های MEF.
متوقف‌کردن تقسیم سلول‌های فیدر در حالی که زنده و متابولیک باقی بمانند.

دام عملی ۳

سلول فیدر باید زنده ولی غیرتقسیم‌شونده باشد؛ ادامهٔ تقسیم فیدر، ارزیابی و نگهداری کلونی ESC را مختل می‌کند.

۰۷
هویت مولکولی

مارکرهای ICM، تروفوبلاست و ESC

گروه سلولیمارکرهای داخل‌سلولی یا رونویسیمارکرهای سطحی/آنزیمی
ICM و ESCOCT4، Nanog، STAT3SSEA3، SSEA4، TRA-1-60، TRA-1-81 و آلکالین فسفاتاز
تروفوبلاستEomesodermin، CDX2در متن مارکر سطحی مشخصی فهرست نشده است
روش شناساییاصل روشنتیجه
رنگ‌آمیزی آنتی‌بادی فلورسنتاتصال آنتی‌بادی اختصاصی به آنتی‌ژن سطحیمشاهدهٔ سیگنال فلورسنت در سلول مثبت
فعالیت آلکالین فسفاتازسنجش فعالیت آنزیمی بالا در کلونی‌های پرتوانکمک به تأیید هویت پرتوان
بررسی فاکتور رونویسیاندازه‌گیری بیان OCT4، Nanog یا STAT3تفکیک حالت بنیادی از تمایز

دام مفهومی ۴

وجود یک مارکر منفرد برای اثبات پرتوانی کافی نیست؛ نتیجهٔ معتبر از ترکیب مارکرهای مولکولی، مورفولوژی و آزمون تمایز به دست می‌آید.

۰۸
ظرفیت درمانی و پژوهشی

تمایز ESC به سلول‌های تخصصی

تمایز سلول‌های بنیادی پرتوان به رده‌های مختلف
تمایز سلول‌های بنیادی پرتوان به رده‌های مختلف سلولی
سلول هدفلایهٔ زایاکاربرد مطرح‌شده
نوروناکتودرمآسیب نخاعی، آلزایمر و پارکینسون
کاردیومیوسیتمزودرمنارسایی‌ها و آسیب‌های قلبی
سلول بتای پانکراساندودرمتولید انسولین و درمان دیابت
سلول دندریتیکردهٔ خونسازایمونوتراپی سرطان
استئوبلاست و کندروسیتمزودرمبیماری استخوانی و آرتروز
هپاتوسیتاندودرمدرمان و مطالعهٔ متابولیسم دارو

نکتهٔ امتحانی

پرتوانی به معنی توان ساخت مشتقات هر سه لایهٔ زایای رویانی است؛ کاربردهای درمانی از این ظرفیت منشأ می‌گیرند.

۰۹
تمایز برون‌تنی

تشکیل جسم رویانی با روش قطرهٔ آویزان

روش قطره آویزان برای تشکیل جسم رویانی
روش قطرهٔ آویزان برای تشکیل جسم رویانی
سلول‌های ESC در قطره‌ای از محیط کشت قرار می‌گیرند.
ظرف برعکس می‌شود و قطره به‌صورت معلق باقی می‌ماند.
سلول‌ها در نبود لایهٔ تغذیه‌کننده به یکدیگر نزدیک و تجمع پیدا می‌کنند.
تودهٔ شبه‌رویانی یا جسم رویانی تشکیل می‌شود.
جسم رویانی خودبه‌خود یا در حضور عامل القایی به رده‌های مختلف تمایز می‌یابد.
نوع تمایزشرایطکاربرد
خودبه‌خودیحذف سیگنال‌های نگهدارنده و عدم افزودن عامل جهت‌دهندهاثبات توان ساخت سه لایهٔ زایا
هدایت‌شدهافزودن فاکتور یا محیط القاییتولید ردهٔ سلولی مشخص

دام مفهومی ۵

جسم رویانی خودِ رویان کامل نیست؛ توده‌ای سه‌بعدی و شبه‌رویانی در کشت است که برای مطالعهٔ تمایز استفاده می‌شود.

۱۰
تمایز هدفمند

عوامل القایی و ارزیابی ردهٔ حاصل

ردهٔ هدفعامل یا شرایط ذکرشدهنحوهٔ تأیید
سلول عصبیرتینوئیک اسیدبررسی مورفولوژی و مارکرهای عصبی
سلول عضلهٔ قلبیDMSO، رتینوئیک اسید یا سطح سرمی بالابررسی ویژگی و مارکر کاردیومیوسیتی
رده‌های سه لایهٔ زایاتمایز خودبه‌خودی جسم رویانیشناسایی مارکرهای اکتودرم، مزودرم و اندودرم
پرسش کنترلیچرا مهم است؟
آیا سلول هنوز مارکر پرتوانی دارد؟برای سنجش باقی‌ماندن سلول تمایزنیافته و خطر تومور
چند درصد سلول‌ها به ردهٔ هدف رسیده‌اند؟برای ارزیابی خلوص محصول
آیا سلول عملکرد تخصصی دارد؟صرف بیان مارکر، عملکرد درمانی را تضمین نمی‌کند
۱۱
رده‌های پایدار و پذیرش فناوری

ردهٔ ESC و چرخهٔ بلوغ فناوری

به‌دلیل محدودیت دسترسی مستقیم به بالستوسیست، رده‌های سلولی ESC در شرایط استاندارد حفظ می‌شوند تا قدرت تکثیر و تمایز آن‌ها برای مطالعات مکرر باقی بماند.

مرحلهٔ فناوریوضعیتپیام برای سلول بنیادی
افزایش اولیهٔ انتظارتمرکز شدید پژوهش‌ها بر مزایاانتظار درمان سریع بیماری‌های متعدد
آشکارشدن مشکلاتافزایش نگرانی دربارهٔ تومور، رد و اخلاقکاهش هیجان اولیه
حل تدریجی چالش‌هااستانداردسازی کشت و کنترل کیفیتکاربردهای واقع‌بینانه‌تر
مرحلهٔ پایدارشناخت هم‌زمان مزایا و محدودیت‌هااستفادهٔ هدفمند و ایمن‌تر

نکتهٔ امتحانی

ردهٔ سلولی برای دسترسی پایدار و تکرارپذیر ایجاد می‌شود؛ ردهٔ ESC از نظر هویت بنیادی باید ویژگی‌های ESC اولیه را حفظ کند.

۱۲
تعریف عملکردی

معیارهای پرتوان نامیدن یک سلول

نقشهٔ ذهنی معیارها و آزمون‌های پرتوانی
اثبات پرتوانی ترکیب ویژگی‌های پایدار و آزمون‌های عملکردی

معیارهای پایه

نامیرایی در کشت، کلون‌زایی و قابلیت تمایز گسترده سه معیار اصلی‌اند.

آزمون برون‌تنی

تشکیل جسم رویانی، تمایز خودبه‌خودی یا هدایت‌شده و شناسایی مشتقات سه لایهٔ زایا.

آزمون تراتوما

تزریق به موش فاقد ایمنی و مشاهدهٔ بافت‌های مشتق از اکتودرم، مزودرم و اندودرم.

آزمون کایمر

تزریق سلول به بالستوسیست دیگر و مشارکت آن در ساخت بافت‌های جنین و حتی ردهٔ زایا.

معیارتعریفآزمون عملی
نامیراییبقای طولانی و تکثیر در شرایط آزمایشگاهیپاساژهای مکرر و حفظ رشد
کلون‌زاییتوان یک سلول منفرد برای ساخت کلونیکشت تک‌سلولی و شمارش کلونی
قابلیت تمایز گستردهساخت مشتقات سه لایهٔ زایا و ردهٔ زایاجسم رویانی، تراتوما یا مشارکت در کایمر

دام مفهومی ۶

تکثیر زیاد به‌تنهایی معادل پرتوانی نیست؛ سلول باید دامنهٔ تمایز گسترده و عملکرد آزمون‌پذیر داشته باشد.

۱۳
آزمون‌های کشت

اثبات پرتوانی در شرایط برون‌تنی

روشفرایندشاهد پرتوانیمحدودیت
جسم رویانیکشت معلق و تمایز خودبه‌خودیوجود مشتقات سه لایهٔ زایاکنترل پایین بر نسبت رده‌ها
تمایز هدایت‌شدهافزودن عوامل رشد و محیط القاییتولید ردهٔ هدف و مارکر اختصاصیممکن است خلوص کامل نباشد
مارکرهای پرتوانیبررسی OCT4، Nanog و مارکرهای سطحیتأیید حالت بنیادیآزمون عملکردی کامل نیست
کلون‌زاییرشد یک سلول منفردتشکیل کلونی جدیددامنهٔ تمایز را به‌تنهایی ثابت نمی‌کند

دام مفهومی ۷

مارکر مثبت، «هویت» را نشان می‌دهد؛ آزمون تمایز، توان عملکردی را ثابت می‌کند. این دو جای یکدیگر را نمی‌گیرند.

۱۴
آزمون‌های درون‌تنی

تراتوما، کایمر و تولید حیوان تراریخته

آزمون تشکیل تراتوما و مشارکت در کایمر
آزمون تشکیل تراتوما و مشارکت سلول پرتوان در کایمر
تولید موش تراریخته با استفاده از ESC
تولید موش تراریخته با استفاده از سلول بنیادی رویانی
آزمونروشنتیجهٔ مثبتمفهوم اثبات‌شده
تراتوماتزریق سلول به موش Nude یا NODتشکیل بافت‌های سه لایهٔ زایاپرتوانی درون‌تنی و هم‌زمان خطر تومور
کایمرتزریق سلول به بالستوسیست حیوان دیگرمشارکت در بافت‌های جنین متولدشدهتوان ادغام و تمایز طبیعی
انتقال ردهٔ زایامشارکت سلول اصلاح‌شده در اسپرم یا تخمکانتقال ژن به نسل بعدورود تغییر ژنتیکی به خط زایا

نکتهٔ امتحانی

کایمر موجودی است که جمعیت‌های سلولی با ژنوم‌های متفاوت دارد. موجودی که پس از چند نسل همهٔ سلول‌هایش ژنوم اصلاح‌شده را دارند، دیگر کایمر محسوب نمی‌شود.

۱۵
کاربرد درمانی

چرا تزریق مستقیم ESC خطرناک است؟

نقشهٔ ذهنی چالش‌های کاربرد درمانی ESC
چالش‌های ESC توان بالا همراه با خطرهای زیستی و اخلاقی

تومورزایی

باقی‌ماندن سلول پرتوان تمایزنیافته می‌تواند تراتوما ایجاد کند.

تمایز نامناسب

همهٔ سلول‌ها به ردهٔ هدف تبدیل نمی‌شوند و امکان تشکیل بافت نابجا وجود دارد.

ناپایداری ژنتیکی

کشت طولانی ممکن است تغییرات DNA یا ناهنجاری کروموزومی ایجاد کند.

رد ایمنی و اخلاق

سلول آلوژنیک توسط سیستم ایمنی شناخته می‌شود و منشأ جنینی نیز بحث اخلاقی ایجاد می‌کند.

خطرعلتپیامدراه کاهش خطر
تراتوماباقی‌ماندن سلول تمایزنیافتهتودهٔ شامل بافت‌های مختلفتمایز پیش از پیوند و حذف سلول پرتوان باقی‌مانده
بافت نابجاتمایز به ردهٔ غیرهدفاختلال عملکرد محل پیوندافزایش خلوص ردهٔ هدف
رشد توده‌اینبود مهار تماسی و تکثیر بالارشد روی‌هم و تشکیل تودهکنترل دقیق تراکم و سرنوشت سلولی
تغییر ژنتیکیپاساژ و کشت طولانیناهنجاری کروموزومی و رفتار غیرطبیعیکنترل دوره‌ای کاریوتیپ و DNA

دام امتحانی ۸

پرتوانی هم مزیت است و هم خطر؛ هرچه توان تمایزی و تکثیری بالاتر باشد، احتمال تومورزایی در محصول تصفیه‌نشده بیشتر است.

۱۶
کنترل کیفیت پیش از پیوند

ویژگی‌های لازم و مسائل ایمنی

ویژگی مطلوبآزمونمعیار پذیرش
خودنوزاییپاساژ و ارزیابی کلونیحفظ هویت بنیادی در نسل‌های متوالی
پرتوانیمارکر، جسم رویانی و آزمون درون‌تنیتوان ساخت سه لایهٔ زایا
خلوص ردهٔ هدفمارکر و آزمون عملکردیحداقل سلول نامرتبط یا تمایزنیافته
ثبات ژنتیکیکاریوتیپ و بررسی DNAنبود تغییر طولانی‌مدت نامطلوب
ایمنی زیستیآزمون تومورزایی و پیگیری طولانینبود تراتوما و بافت نابجا
دام ۹تمایز موفق به معنی خلوص صددرصدی نیست؛ سلول‌های تمایزنیافتهٔ باقی‌مانده باید شناسایی شوند.
دام ۱۰کاریوتیپ طبیعی در ابتدای کشت، سلامت ژنتیکی پاساژهای طولانی را تضمین نمی‌کند.
۱۷
ایمنی پیوند

شناسایی مستقیم و غیرمستقیم آنتی‌ژن

شناسایی مستقیم و غیرمستقیم آنتی‌ژن
مسیرهای مستقیم و غیرمستقیم شناسایی آنتی‌ژن و فعال‌شدن سلول T
نقشهٔ ذهنی شناسایی ایمنی سلول پیوندی
رد ایمنی فعال‌شدن سلول T از مسیر مستقیم یا غیرمستقیم

مسیر مستقیم

مولکول‌های MHC غیرخودی روی سلول پیوندی مستقیماً توسط سلول‌های T شناسایی می‌شوند.

مسیر غیرمستقیم

سلول بیگانه توسط ماکروفاژ هضم و آنتی‌ژن آن روی MHC-II ارائه می‌شود.

پیامد

فعال‌شدن پاسخ سلولی، حمله به سلول‌های پیوندی و کاهش بقای پیوند را در پی دارد.

راهکارها

سیکلوسپورین A، کاهش بیان MHC یا همراه‌کردن سلول مزانشیمی برای تعدیل ایمنی مطرح شده است.

روش کاهش ردسازوکارمحدودیت
سیکلوسپورین Aسرکوب پاسخ ایمنیافزایش خطرهای ناشی از سرکوب طولانی‌مدت ایمنی
کاهش بیان MHCکم‌کردن شناسایی سلول بیگانهنیازمند دستکاری ژنتیکی و کنترل ایمنی
همراهی با MSCاستفاده از اثر تعدیل‌کنندهٔ ایمنی سلول مزانشیمیپاسخ کامل و قطعی را تضمین نمی‌کند

دام مفهومی ۱۱

رد پیوند فقط با تماس مستقیم سلول T و MHC سلول پیوندی رخ نمی‌دهد؛ ارائهٔ آنتی‌ژن توسط سلول‌های میزبان نیز مسیر غیرمستقیم را فعال می‌کند.

۱۸
منبع سلول و رضایت آگاهانه

مسائل اخلاقی و منابع تهیهٔ ESC

منبعشرحچالش اخلاقی
بالستوسیست مازاد IVFجنین‌های قابل‌استفاده‌نبوده یا مازاد با رضایت زوجینازبین‌رفتن بالستوسیست هنگام جداسازی ICM
جنین نگهداری‌شدهجنین‌های منجمد برای بارداری احتمالی آیندهنیاز به تصمیم و رضایت روشن زوجین
بکرزایی یا کلونینگ درمانیتلاش برای تولید منبع سلولی بدون لقاح معمول اسپرم و تخمکادامهٔ بحث دربارهٔ جایگاه اخلاقی ساختار حاصل
محور اختلافدیدگاه اولدیدگاه دوم
آغاز هویت انسانیبالستوسیست هنوز انسان کامل تلقی نمی‌شوداز زمان لقاح ظرفیت تبدیل به انسان وجود دارد
فایدهٔ درمانینجات یا بهبود بیمار می‌تواند استفاده را توجیه کندهدف درمانی لزوماً ازبین‌بردن جنین را توجیه نمی‌کند
سیاست پژوهشیآزادی بیشتر با نظارت و رضایتمحدودیت یا ممنوعیت جداسازی ESC

دام مفهومی ۱۲

مسئلهٔ اخلاقی فقط «استفاده از سلول» نیست؛ محور اصلی، منشأ بالستوسیست، رضایت زوجین و پیامد جداسازی ICM است.

۱۹
ایجاد ردهٔ اولیه

روش‌های جداسازی تودهٔ سلولی داخلی

مقایسه روش‌های جداسازی ESC
مقایسهٔ ایمونوسرجری، رشد خروجی و روش‌های میکرودستکاری در جداسازی ESC
نقشهٔ ذهنی روش‌های جداسازی ICM
جداسازی تودهٔ سلولی داخلی حذف تروفوبلاست و حفظ سلول‌های درونی

مکانیکی

بالستوسیست با هولدر و سوزن میکرو دستکاری می‌شود و ICM با جداسازی فیزیکی خارج می‌گردد.

رشد خروجی

بالستوسیست در ظرف کشت می‌چسبد؛ تروفوبلاست پهن می‌شود و ICM به‌صورت گنبدی رشد می‌کند.

ایمونوسرجری

آنتی‌بادی به سلول‌های سطحی می‌چسبد و کمپلمان تروفوبلاست را حذف می‌کند؛ ICM باقی می‌ماند.

لیزر یا میکرودستکاری

روش‌های تکمیلی امکان جداسازی انتخابی‌تر و ایجاد ردهٔ اولیهٔ ESC را فراهم می‌کنند.

روشاصل جداسازیمزیتمحدودیت
مکانیکیجداکردن فیزیکی ICM با سوزن و میکرومانیپولاتورعدم نیاز به کمپلمانوابسته به مهارت و خطر آسیب مکانیکی
رشد خروجیچسبیدن تروفوبلاست و رشد گنبدی ICMمشاهدهٔ واضح کلونی اولیهزمان‌بر و احتمال همراهی سلول ناخواسته
ایمونوسرجریآنتی‌بادی علیه سلول سطحی و لیز با کمپلمانحذف انتخابی تروفوبلاستنیاز به معرف ایمنی و کنترل دقیق
لیزر ابلیشنحذف انتخابی سلول‌ها با انرژی لیزردقت بالانیازمند تجهیزات تخصصی

نکتهٔ امتحانی

در ایمونوسرجری، آنتی‌بادی و کمپلمان به سلول‌های سطحی تروفوبلاست دسترسی دارند؛ ICM درون بالستوسیست حفظ می‌شود.

۲۰
دیگر سلول‌های پرتوان رویانی

سلول زایای رویانی و سلول کارسینومای رویانی

منشأ انواع سلول‌های بنیادی پرتوان انسانی
منشأ انواع سلول‌های پرتوان انسانی
مهاجرت سلول‌های زایای بدوی
مهاجرت سلول‌های زایای بدوی به ستیغ تناسلی
کلونی سلول کارسینومای رویانی
کلونی‌های سلول کارسینومای رویانی
ویژگیEGCECC
منشأسلول زایای بدوی در ستیغ تناسلیسلول زایا با تبدیل توموری
زمان جداسازی انسانیحدود هفتهٔ ۵ تا ۹ جنینی در متناز تومور موجود در گناد یا خارج گناد
مورفولوژی کلونیپس از ۱ تا ۳ هفته کلونی‌های فشردهکلونی توموری با جمعیت تمایزنیافته
محلستیغ تناسلیگناد، ناحیهٔ دهانی‌ـ‌حلقی یا ساکروکوکسیژیال
خطرچالش منبع جنینیتومورزایی ذاتی
گونه/گروهمارکرهای ذکرشده
موشSSEA1
انسانSSEA3، SSEA4، TRA-1-60، TRA-1-81، OCT4 و فعالیت آلکالین فسفاتاز

دام مفهومی ۱۳

تراتوم شامل بافت‌های تمایزیافتهٔ متعدد است؛ ECC جمعیت پرتوان و توموریِ تمایزنیافته درون یا مرتبط با چنین توده‌هایی است.

۲۱
مرور شب امتحان

جدول طلایی، دام‌ها و جمع‌بندی

کلیدواژهپاسخ سریع
منشأ ESCICM بالستوسیست
منشأ EGCPGC در ستیغ تناسلی
منشأ ECCتومور سلول زایا
مارکرهای ICMOCT4، Nanog و STAT3
مارکر تروفوبلاستCDX2 و Eomesodermin
لایهٔ تغذیه‌کننده کلاسیکMEF
روش تشکیل جسم رویانیقطرهٔ آویزان
آزمون پرتوانی برون‌تنیجسم رویانی و تمایز سه لایه
آزمون پرتوانی درون‌تنیتراتومـا و کایمر
خطر اصلی ESC تمایزنیافتهتومورزایی و بافت نابجا
مسیر مستقیم ردشناسایی MHC غیرخودی روی سلول پیوندی
مسیر غیرمستقیم ردارائهٔ آنتی‌ژن توسط سلول میزبان
جداسازی انتخابی تروفوبلاستایمونوسرجری
دام ۱۴ESC از ICM می‌آید؛ EGC از ستیغ تناسلی و ECC از تومور سلول زایا.
دام ۱۵OCT4 و Nanog مارکر پرتوانی‌اند؛ CDX2 به نفع تروفوبلاست است.
دام ۱۶Feeder layer فقط بستر فیزیکی نیست و عوامل نگهدارنده ترشح می‌کند.
دام ۱۷جسم رویانی آزمون برون‌تنی است؛ تراتوما و کایمر آزمون‌های درون‌تنی‌اند.
دام ۱۸تراتومای مثبت، پرتوانی را نشان می‌دهد اما هم‌زمان هشدار تومورزایی است.
دام ۱۹کایمر با حیوان کاملاً تراریخته یکسان نیست؛ کایمر جمعیت‌های ژنومی متفاوت دارد.
دام ۲۰بیان مارکر به‌تنهایی توان تمایزی واقعی را اثبات نمی‌کند.
دام ۲۱رد ایمنی می‌تواند از مسیر مستقیم یا ارائهٔ غیرمستقیم آنتی‌ژن رخ دهد.
دام ۲۲تکثیر طولانی بدون کنترل کاریوتیپ، موفقیت کشت محسوب نمی‌شود.
دام ۲۳ECC پرتوان است، اما سلول بنیادی درمانی ایمن محسوب نمی‌شود؛ منشأ آن توموری است.
جمع‌بندی ۱هویت سلول پرتوان با منشأ، مارکر و آزمون عملکردی تعریف می‌شود.
جمع‌بندی ۲کشت ESC نیازمند جلوگیری فعال از تمایز خودبه‌خودی است.
جمع‌بندی ۳پرتوانی باید هم در کشت و هم در مدل زنده ارزیابی شود.
جمع‌بندی ۴توان تمایزی بالا، خطر تومور و بافت نابجا را افزایش می‌دهد.
جمع‌بندی ۵رد ایمنی و مسائل اخلاقی دو مانع مستقل کاربرد بالینی ESC هستند.
جمع‌بندی ۶روش جداسازی ICM باید تروفوبلاست را حذف و قابلیت کلونی‌زایی سلول داخلی را حفظ کند.

جمع‌بندی یک‌خطی

کار با سلول‌های بنیادی رویانی بر چهار محور استوار است: منشأ صحیح، حفظ پرتوانی در کشت، اثبات عملکردی و کنترل خطرهای توموری، ایمنی و اخلاقی.